ACTIVACIÓN E IDENTIFICACIÓN BIOQUÍMICA DE LOS CONGLOMERADOS DE BACTERIAS PROBIÓTICAS ABT-5, ABY-3 Y BC-7 UTILIZANDO EL KIT RÁPIDO API 50 CH
Carmen Ruíz
cruiz@imarpe.pe
Instituto del Mar del Perú
RESUMEN
Se realizó la activación de los conglomerados bacterianos liofilizados ABT-5 , ABY-3 y BC-7, así como la identificación de bacterias predominantes. La activación de las cepas se realizó en medio líquido (caldo MRS) y solido (agar MRS). El recuentode las bacterias presentes se realizo mediante técnicas de dilución en placa con agar MRS. Para la identificación bioquímica de los microorganismos se utilizaron el Kit API 50 CH , API 50 CHL y el Software API WEB. Los resultados mostraron presencia de bacterias del género Lactobacillusen las tres cepas estudiadas.
Palabras Claves: Conglomerados, probióticos, identificación bioquímica, Lactobacillus.
ABSTRAT
We performed the activation of lyophilized bacterial conglomerates ABT-5, ABY-3 and BC-7, and the identification of predominant bacteria. The activation of the strains was performed in liquid medium (MRS broth) and solid (MRS agar). The bacteria count is realized through dilution in MRS agar plate. For the biochemical identification of microorganisms used the API 50 CH kit, API 50 CHL and API Software WEB. The results showed presence of bacteria of the genus Lactobacillus in the three strains tested.
Key words: Conglomerates, probiotics, biochemical identification, Lactobacillus.
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En los últimos años el sector de la acuicultura ha mostrado interés en la aplicación de probióticos debido a los efectos beneficiosos obtenidos por su uso, reflejado tanto en el estado de salud y tasa de crecimiento de los organismos acuáticos, como en la calidad del agua y su papel en el control biológico de enfermedades infecciosas (Rodríguez et al. 2007).
En este sentido uno de los objetivos del Laboratorio de Cultivo Marinos para el presente año fue el desarrollo de un protocolo para la activación y mantenimiento de conglomerados de bacterias liofilizadas comerciales en medio líquido y sólido, así como la identificación bioquímica de los microorganismos presentes en estos, con la finalidad de afinar el protocolo final que se usara en el laboratorio, para la posterior aplicación de las bacterias en el cultivo de alimento vivo.
Se trabajó con 3 conglomerados de bacterias comerciales: Cultivo liofilizado, cepa ABY-3, cultivo liofilizado, cepa FD- DVS ABT-5, y cultivo liofilizado, cepa BC-7, (proporcionado por el laboratorio costero de Tumbes).
Para la identificación bioquímica se utilizaron el Kit API 50 CH , API 50 CHL y el Software API WEB.
El API 50 CH es un sistema estandarizado compuesto por 50 ensayos bioquímicos destinados al estudio del metabolismo de los carbohidratos en los microorganismos.
El API 50 CH se utiliza en combinación con el API 50 CHL Medium para la identificación de Lactobacillus y microorganismos próximos.
Durante el período de incubación, la fermentación se traduce en un cambio de color en el tubo, debido a una producción de acido en anaerobiosis, revelada por el indicador de pH del medio elegido. El primer tubo, sin principio activo sirve como testigo negativo.
2.1 ACTIVACIÓN DE CEPAS
CEPA ABT-5
Se pesaron 0.0164 g de perlas de ABT-5 y se colocó en un tubos con 10mL de caldo MRS estéril, este se incubo a 30ºC por 48 horas. Asimismo se colocó el mismo peso de las perlas en un tubo con 9 mL de solución salina al 0,85 % de NaCl para tener una suspensión bacteriana con turbidez, a fin de utilizar la escala de Mc Farland, la cual está constituida por un patrón de 10 tubos basado en la capacidad de precipitación del Cloruro de Bario (Cl2Ba al 1% ) en presencia del ácido sulfúrico ( SO4H2 1%) en diferentes cantidades.
Se comparó lo obtenido en los tubos con ABT-5, con la escala de Mc Farland (Tabla 1) y se observo que la concentración obtenida fue muy similar al tubo Nº 7, lo que indica una concentración de 2,1X109 UFC/mL.
Tabla 1. Escala Mac Farland
TUBO |
Cl2Ba 1% |
SO4H2 1% |
UFC/mL |
0,5 |
0,05 |
9,95 |
1,5x108 |
1 |
0,1 |
9,9 |
3,0x108 |
2 |
0,2 |
9,8 |
6,0x108 |
3 |
0,3 |
9,7 |
9,0x108 |
4 |
0,4 |
9,6 |
1,2x109 |
5 |
0,5 |
9,5 |
1,5x109 |
6 |
0,6 |
9,4 |
1,8x109 |
7 |
0,7 |
9,3 |
2,1x109 |
8 |
0,8 |
9,2 |
2,4x109 |
9 |
0,9 |
9,1 |
2,7x109 |
10 |
1,0 |
9,0 |
3,0x109 |
Diluciones
Pasadas 48 horas, de los tubos con ABT-5, se realizaron diluciones sucesivas de 10-1.10-2, 10-3 , usando pipetas estériles para cada dilución. Se tomó un 1mL de la suspensión bacteriana y se colocó en un tubo con 9mL del caldo MRS, haciendo un total de 10 mL, (1:10), se evitó formar espuma, mezclando manualmente cada dilución por 7 segundos, y se continuó con las diluciones seriadas en 1:100, 1:1000.
Cada dilución fue sembrada por diseminación en placas con agar MRS, para lo cual se colocaron 10 uL de suspensión, fue diseminada en toda la placa, con ayuda de una espátula Drigalski estéril, se sellaron las placas con “parafilm” y se incubaron a 30ºC por 72 horas.
Recuento en placa a las 72 horas
Para el conteo, se escogió las placas que presentaron entre 30 y 300 colonias, para ello se colocó la placa petri invertida con la superficie de vidrio hacia arriba. Con un contómetro manual se hizo el recuento de las colonias presentes en la placa, asimismo se observó la morfología de las colonias de bacterias como: forma, tamaño, borde, consistencia, color. Se utilizó la siguiente fórmula para realizar el conteo en placas:
Posteriormente se aislaron 2 UFC de la placa, cada una de las cuales fueron sembradas por separado en tubos con Agar MRS en plano inclinado, incubándolos a 30 ºC por 72 horas, luego se procedió a la identificación bioquímica de los microorganismos presentes.
CEPA ABY-3
La cepa ABY-3 es mantenida en el laboratorio en agua de mar filtrada esterilizada + melaza. Se realizaron diluciones seriadas de 10-1.10-2,10-3 con pipetas estériles. Se siguió el mismo procedimiento que con la cepa anterior.
Luego, se realizó el sembrado de cada dilución en placas con agar MRS, utilizando el método de estrías, adicionamos 10 uL en cada placa, las que se incubaron a 30 ºC por 72 horas.
Para el recuento en placa se utilizó el mismo procedimiento descrito anteriormente, aislando 2 UFC de la placa, cada una fue sembrada por separado en tubos con Agar MRS en plano inclinado, incubándose a 30 ºC x 72 horas. Luego se procedió a la identificación bioquímica de los microorganismos.
CEPA BC-7
Se peso 0.05 g. del conglomerado en polvo de BC-7 , colocándose este en un tubo con 10 mL de Caldo MRS, y luego incubado a 30 ºC por 72 horas. Se realizó la técnica de dilución en tubos 10-1, 10-2, 10-3 .
Posteriormente se tomaron 20 uL de cada tubo y se colocaron en placas con Agar MRS, incubándose a 30 ºC por 72 horas.
Aislamos 2 UFC de la placa, cada una fueron sembrados por separado en tubos con Agar MRS en plano inclinado, incubándolos a 30ºC x 72 horas, luego se procedió a la identificación bioquímica de estos microorganismos presentes.
2.2 IDENTIFICACIÓN BIOQUÍMICA DE LAS CEPAS
El patrón de fermentación de hidratos de carbono, fue determinado con la galería enzimática API 50 CH, API 50CHL y el software API WEB.
Cada test API 50 CH consta de cincuenta recipientes que contienen una zona anaerobia (la porción en forma de tubo) para el estudio de fermentación, y una zona aerobia (la porción en forma de cúpula) para el estudio de oxidación o asimilación.
El primer recipiente no contiene ningún substrato y se usa como control negativo. El resto de recipientes contienen una cantidad determinada de substrato deshidratado, pertenecientes a la familia de hidratos de carbono y sus derivados (heterósidos, polialcoholes, ácidos urónicos).
Estos substratos pueden ser metabolizados mediante diferentes rutas bioquímicas:
Para evaluar la última de estas rutas (fermentación) se usó la galería api 50 CH. La composición de cada test se muestra en la Tabla 2.
Tabla 2. Substratos incluidos en cada uno de los 50 recipientes de la galería enzimática para bactérias ácido-lácticas API 50 CH .
Tira 0-9 |
Tira 10-19 |
Tira 20-29 |
Tira 30-39 |
Tira 40-49 |
Pocillo/substrato |
Pocillo/substrato |
Pocillo/substrato |
Pocillo/substrato |
Pocillo/substrato |
|
|
|
|
|
0. CONTROL* |
10. GALactose |
20. 1-Methyl-D-Mannoside |
30. MELibiose |
40. D-TURanose |
1. GLYcerol |
11. GLUcose |
21. 1-Methyl-D-Glucoside |
31. Sucrose |
41. D-LYXose |
2. ERYthrol |
12. FRUctose |
22. N-Acetyl-Glucosamine |
32. TREhalose |
42. D-TAGatose |
3. D-ARAbinose |
13. MaNosE |
23. AMYgdaline |
33. INUlin |
43. D-FUCose |
4. L-ARAbinose |
14. SorBosE |
24. ARButin |
34. MeLeZitose |
44. L-FUCose |
5. RIBose |
15. RHAmnose |
25. ESCulin |
35. RAFfinose |
45. D-ARabitol |
6. D-XYLose |
16. DULcitol |
26. SALicin |
36. Starch |
46. L-ARabitol |
7. L-XYLose |
17. INOsitol |
27. CELlobiose |
37. GLYcoGen |
47. GlucoNaTe |
8. ADOnitol |
18. MANitol |
28. MALtose |
38. XyLiTol |
48. 2-Keto-Gluconate |
9. ß-Methyl-D-Xyloside |
19. SORbitol |
29. LACtose |
39. GENtiobiose |
49. 5-Keto-Gluconate |
En la práctica, sólo se usan las abreviaturas en mayúsculas de los respectivos hidratos de carbono
2.3 PREPARACIÓN DE LAS GALERÍAS API 50 CH
PREPARACIÓN DEL INOCULO
- Se abrió un tubo de ensayo conteniendo 2 mL de agua destilada estéril.
- Luego tomamos varias colonias del tubo del cultivo de plano inclinado en agar MRS con ayuda del asa de siembra.
2.4 INOCULACIÓN DE LAS GALERÍAS
Para la interpretación de los resultados los recipientes que aparecieron sin cambio de color (púrpura) se consideraron como “negativos” y aquellos dónde se detectó un cambio de color (amarillo, ó negro en el recipiente nº 25) (de acuerdo con el color del control) se consideró “positivo”.
Las lecturas de las galerías se realizaron a las 24 y 48 horas. Cada ensayo positivo, negativo y dudoso fueron anotados en la hoja de resultados, con ayuda del programa informático API WEB, el cual tiene una tabla de identificación asociada a la galería para los resultados esperados de las diferentes reacciones.
El resultado de las bacterias identificadas se observa en la tabla 3.
Tabla 3. Bacterias identificadas en los conglomerados ABY-3, ABT-5 y BC-7.
Conglomerado |
Cepa Identificada |
Probabilidad (%) |
Nivel de Identification |
ABT-5 |
Lactobacillus fermentum 1 |
96.6 |
Buena |
ABY-3 |
Lactobacillus acidophilus 3 |
60.3 |
Regular |
ABY-3 |
Pediococcus damnosus |
91.3 |
Buena |
BC-7(2) |
Lactobacillus delbrueckii ssp delbrueckii |
91.8 |
Buena |
BC-7(3) |
Lactobacillus delbrueckii ssp delbrueckii |
91.8 |
Buena |
La cepa BC-7(2) y BC-7(3) presentó una coincidencia con un 91.8 de probabilidad.
El Kit Api 50 CH, es un kit rápido para identificación de Lactobacillus , pero puede presentar una margen de error y para ello se cuenta con otras pruebas rápidas para la seguridad de la identificación.
De acuerdo a los resultados observados en cuanto a características morfológicas, fisiológicas y bioquímicas, las cepas presentaron bacterias del género Lactobacillusy las bacterias pertenecientes a este género, han sido las más utilizadas hasta el momento para la obtención de biopreparados con propiedades probióticas, ya sea de forma individual o en combinación con otros microorganismos y/o metabolitos (Salminen,1993).
Los tres conglomerados comerciales presentaron bacterias del genero Lactobacillus, utilizados como cultivos termófilos en la producción de derivados lácteos caracterizadas por soportar altas temperaturas de cocción. Posteriormente serán aplicados en el cultivo de rotíferos para ver su densidad de población.
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